您現在的位置是:首頁 > 籃球
「開講啦」如何提取菸草葉綠體蛋白?
- 由 伯遠生物 發表于 籃球
- 2021-10-01
1乙基環丙烷對稱嗎
本文翻譯自Bio-protocol (https://bio-protocol。org/cn/Default。aspx)。Bio-protocol是為一線科研人員服務的期刊,其專精於遴選、發表從基礎到高階、從傳統到創新的各種實驗方案。
摘要
這種快速的方法可以從本氏菸草葉片中提取葉綠體富集的蛋白,葉綠體富集的蛋白被瞬時轉化為表達一個感興趣的表位標記蛋白。因此,當它與Western blot分析相結合時,可以作為研究相關蛋白葉綠體定位的工具。
農桿菌介導的轉化(Agroinfiltration, Romeis et al。, 2001)可以在菸草葉片中瞬時表達攜帶表位標籤的蛋白。另外,與含土壤傳播小麥花葉病毒19K的農桿菌菌株共滲透可以抑制轉錄後基因沉默,從而提高轉化效率 (Te et al。, 2005)。
轉化葉片的葉綠體分離方法是基於Romeis等人(2001)稍作修改後的方法,包括細胞壁和細胞膜的機械破裂,過濾去除未破碎的組織,以及透過Percoll層離心分離完整的葉綠體。
材料和試劑
1。 本氏菸草植株;
2。 攜帶重組雙元質粒的根癌農桿菌(
A。tumefaciens
)菌株GV3101,其中感興趣的基因融合在表位標籤上;
3。 攜帶19K的農桿菌GV3101;
4。 胰蛋白腖(AppliChem GmbH,產品目錄編號:403682。1210 );
5。 酵母膏(AppliChem GmbH,產品目錄編號:A1552,0500 );
6。 蔗糖(AppliChem GmbH,產品目錄編號:A2211,0500);
7。 MgSO4(默克公司,目錄編號:105886);
8。 適當的抗生素;
9。 瓊脂(卡爾·羅斯,目錄編號:2266。2);
10。 乙醯丁香酮(Sigma-Aldrich,目錄編號:D134406);
11。 MES緩衝液(卡爾·羅斯,目錄編號:4256。3);
12。 液氮;
13。 細胞分離液(通用電氣醫療保健,目錄編號:17-0891-01);
14。 乙二胺四乙酸二鈉(EDTA)(卡爾·羅斯,目錄編號:8040。1);
15。 二硫蘇糖醇(DTT)(產品目錄編號:A2948);
16。 MgCl2(默克公司,目錄編號:105833);
17。 甘油(AppliChem GmbH,產品目錄編號:A3739,0500);
18。 羥乙基哌嗪乙硫磺酸(卡爾·羅斯,目錄號:9105);
19。 山梨醇(默克公司,目錄編號:56755);
20。 牛血清白蛋白(卡爾·羅斯,目錄編號:8076。2);
21。 無EDTA蛋白酶抑制劑(羅氏診斷公司,目錄編號:11 836 153 001);
22。 YEP培養基(見配方);
23。 混合劑緩衝液(見配方);
24。 分離緩衝液(見配方);
25。 蛋白提取緩衝液(見配方)。
裝置
1。 1ml注射器(Terumo醫療公司,目錄編號:BS-01H);
2。 4°C冷凍離心機;
3。 47μm尼龍網(卡爾·羅斯,目錄編號:XA63。1);
4。 2ml圓底玻璃均質器(A。 Hartenstein,目錄編號:HOG2);
5。 帶有相位反差聚光鏡和相位反差相容物鏡的光學顯微鏡,如物鏡LD A-Plan 40x/0。5 Ph2(ZEISS);
6。 恆溫振盪培養箱;
7。 旋轉搖盪器;
8。 OD600光譜儀;
9。 1。5ml反應管(SARSTEDT AG,目錄編號:72。706);
10。 50ml錐形離心管(SARSTEDT AG,目錄編號:62。548。004)。
步驟
1.本氏煙的瞬時轉化
(1)將含有19K的農桿菌GV3101和攜帶目的基因(帶有表位標籤)載體的農桿菌GV3101分別在含有適當抗生素的YEP瓊脂平板上劃線。在28℃下孵育48h,獲得單克隆。
(2)將培養不超過1周的培養皿中的單個菌落接種到含有15ml YEP培養基(含有適當的抗生素)的50ml離心管中,在28°C、180rpm的條件下過夜。
(3)第二天,將過夜培養物(OD600在1。0~1。5之間)在室溫下以2500×
g
離心10min,捨棄上清液。
(4)將離心收集的農桿菌重新懸浮在5ml混合緩衝液中。
(5)室溫條件下,在旋轉搖床上以120rpm的轉速暗培養2h。
(6)將兩種細菌懸液(19K、目的基因)混合,前者20%、後者80%,最終OD600在0。5至1。0,用於目的基因的瞬時表達。
注:由於19K抑制基因沉默,侵染混合物中19K的比例已被證明可以有效地增強幾種蛋白的瞬時表達。然而,對於其他蛋白質的最佳比值可能會有所不同。侵染混合物OD600高於1。0可能導致對菸草的毒性影響。
(7)將無針頭注射器的尖端壓到3-4周齡、水分充足的下葉表面,注射混合菌液。用第三、第四和第五個的葉片進行農桿菌侵染(圖1A)。每一片葉子一次注射100-150µl的混合物。用記號筆標記葉片上的浸潤區域(圖1B)。
注:在農桿菌侵染的第一天早晨給植物澆水是很重要的。否則,農桿菌很難在不破壞組織的情況下成功滲入葉片組織。
圖1 農桿菌侵染過程。數字為3、4和5的葉片最適於農桿菌侵染,侵染區域用記號筆做了標記。
2.瞬時轉化本氏菸葉綠體的分離
說明:為了獲得完整的葉綠體,應在暗迴圈結束時從菸草植株中收穫植株材料,並將其儲存在黑暗中,以避免在離心過程中過量積累澱粉,導致葉綠體外殼破裂。此外,所有實驗步驟都應在4℃條件下進行。
(1)在農桿菌侵染2-3天后,將瞬時轉化的植物材料,用預冷玻璃均漿器在400μl冰分離均質液中均質。
(2)勻漿透過47μm的尼龍網過濾,並在冰上和黑暗中儲存。
(3)40% Percoll層的製備:將132µl的Percoll層與198µl的分離緩衝液徹底混合,將40%的Percoll層沉積在1。5ml反應管的底部。
(4)將400µl含有勻漿的過濾葉綠體小心地放置在40% Percoll層上,在4°C,7000×
g
條件下離心1min。完整的葉綠體將以綠色的顆粒沉積,而破碎的葉綠體仍然在Percoll層的頂部(圖2)。
注:1。另外,完整的葉綠體的離心也可以在1700×
g
下更溫和地離心6min。
2。棄上清液,將葉綠體在小體積(20-30µl)的分離緩衝液中輕輕重懸浮。富含葉綠體的懸浮液儲存在冰上。
圖2 透過40% Percoll層離心後從完整的葉綠體中分離。
(5)用相差顯微鏡證實了顆粒狀葉綠體的質量。完整的葉綠體顯得不透明,周圍有一個光暈(圖3A)。破碎的葉綠體表現出深綠色、顆粒狀和無折射的外觀。
圖3 在相差顯微鏡下可見完整的葉綠體和破碎的葉綠體。
(6)隨後,以4°C、1000×
g
離心5min,使葉綠體成球,取出並丟棄上清液。
(7)在液氮中休克冷凍葉綠體。
(8)冷凍斷裂的葉綠體在50µl冰冷蛋白提取緩衝液中重新懸浮,4°C、15000×
g
離心10min。
(9)將上清液(含有可溶性葉綠體蛋白)轉移到一個新的離心管中。
(10)富含不溶性葉綠體蛋白的顆粒在50µl冰冷蛋白提取緩衝液中重新懸浮。
(11)樣品可以儲存在-70℃或直接用於Western blot分析,以比較葉綠體部分和瞬時轉化菸草葉片總粗提物中的蛋白表達。
注:從100mg葉片材料中分離的葉綠體蛋白的總產量在10-20g之間。5-10g可用於Western blot分析。
配方
1。YEP培養基
0。5%胰蛋白腖(m/v)
0。5%酵母膏(m/v)
0。5%蔗糖(m/v)
50mM MgSO4
固體培養基:加入1。5%瓊脂(m/v)
對YEP培養基進行高壓滅菌
2。混合緩衝液(必須新鮮配製)
10mM MES(用1M KOH調整pH值為5。8)
10mM MgCl2
150μM乙醯丁香酮
3。分離緩衝液(必須新鮮配製)
0。33M山梨醇
50mM 羥乙基哌嗪乙硫磺酸(用1M KOH調節pH為7。0)
0。1%(m/v)牛血清白蛋白
2mM EDTA
1mM MgCl2
4。蛋白提取緩衝液(必須新鮮配製)
10%(m/v)甘油(來自高壓滅菌原液)
5mM EDTA(來自高壓滅菌原液)
10mM DTT
100mM HEPES(用1M KOH調節pH為7。2,無菌過濾)
蛋白酶抑制劑
References:
1。Pineda, M。, Sajnani, C。 and Baron, M。 (2010)。 Changes induced by the Pepper mild mottle tobamovirus on the chloroplast proteome of
Nicotiana benthamiana
。
Photosynth Res
103(1): 31-45。
2。Romeis, T。, Ludwig, A。 A。, Martin, R。 and Jones, J。 D。 (2001)。 Calcium-dependent protein kinases play an essential role in a plant defence response。
EMBO J
20(20): 5556-5567。
3。Te, J。, Melcher, U。, Howard, A。 and Verchot-Lubicz, J。 (2005)。 Soilborne wheat mosaic virus (SBWMV) 19K protein belongs to a class of cysteine rich proteins that suppress RNA silencing。
Virol J
2: 18。